細胞質染色試劑FDA是綠色熒光標記的細胞質探針，具有494/521nm的最大激發/發射波長。FDA是一種非熒光疏水性熒光素衍生物，它可以通過細胞膜，因此細胞內酯酶水解產生高熒光產物熒光素的二乙酸酯基團。熒光素分子在具有完整膜的細胞中積累，因此綠色熒光可用作細胞活力的標記。不具有完整細胞膜或活性代謝的細胞可能不會積聚

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檢測方法：

● 流式細胞儀 ● 熒光顯微鏡 ● 激光共聚焦

樣本類型：

● 懸浮細胞  ● 貼壁細胞

試劑盒以外自備試劑和儀器：

● 熒光顯微鏡/激光共聚焦 ● PBS緩沖液(pH7.4) ● HBSS（無酚紅）

使用注意事項：

● 旋帽離心管裝的試劑在開蓋前請短暫離心,將蓋內壁上的液體甩至管底,避免開蓋時液體灑落。

● 染色液為DMSO溶液，冬季氣溫較低時在室溫時為凝固狀態，極易粘附在管壁、吸頭壁。注意需要加熱溶解，吸頭也需要放在培養箱預熱，否者容易再次凝固在吸頭內壁產生損耗。

● 使用前，先將本品取出回溫至室溫，并對其進行簡短離心使DMSO溶液集中于管底。

● 細胞處理需要小心操作,盡量避免人為的損傷細胞。

● 標記的條件因細胞種類而異，根據不同樣本的實際染色結果做相應調整，在每次實驗前，請先根據不同的實驗要求、細胞類型、細胞的膜通透性等進行優化，確定最佳條件。

● 以下方法僅供參考，根據需要使用，或者參考文獻的使用方法。

● 染色后立即進行分析。

● 本染色液可用于細胞涂片、細胞的檢測。

使用方法：

1、染色工作液的配制：

根據樣本數量，用HBSS或相應的無血清培養基或其他緩沖液將探針FDA進行500-5000倍稀釋，配制成染色工作液。

【注】：

● 開始實驗前，使用HBSS緩沖液或無血清培養基稀釋染料儲存液到需要的工作濃度。工作濃度應根據不同細胞的預實驗結果確定的最佳工作濃度，建議至少在超過10倍范圍的濃度下進行測試。一般染色終濃度500-5000倍稀釋，1000-2000倍適合大多數細胞樣本。

● 建議收到產品后，根據單次使用量，對母液進行小量分裝，每次使用一管，試劑-20℃避光凍存，一年穩定。

● 工作液現配現用。

● 若細胞在染色后于不含染料的培養基中孵育，熒光信號會衰減。

2、細胞染色

懸浮細胞染色

1) 用PBS洗滌細胞2次。

【注】：

● 500×g離心5分鐘。

2) 加入適量體積的染色工作液重懸細胞，使其密度大約為1×10⁶/mL。

3) 在37℃孵育細胞15～30分鐘，不同的細胞最佳培養時間不同。可以用20分鐘作為起始孵育時間，之后優化體系以得到均一的標記結果。

【注】：

● 若染色不夠充分，建議增加染料濃度或延長染色時間。

4) 孵育結束，500×g離心5分鐘。

5) 移除上清液，再次緩慢加入37℃預熱的培養基重懸細胞。

6) 重復（4），（5）步驟兩次。

貼壁細胞染色

1) 用PBS洗滌細胞2次。

2) 細胞培養板中或細胞爬片上加入適量體積的染色工作液。

【注】：

● 96 孔細胞培養板每孔加入100μL染色液即可。

3) 37℃孵育細胞15～30分鐘，不同的細胞最佳培養時間不同。可以用20分鐘作為起始孵育時間，之后優化體系以得到均一的標記結果。

【注】：

● 若染色不夠充分，建議增加染料濃度或延長染色時間。

4) 吸干染色工作液，用培養液洗培養板或蓋玻片2～3次，每次用預熱的培養基覆蓋所有細胞，然后吸干培養基。

3、用熒光顯微鏡或流式細胞儀檢測

激發波長為488nm，最大發射波長為521nm。

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