核蛋白和胞漿蛋白提取試劑盒提供全套試劑，適用于從各種原代或傳代細胞和各種實體組織，如腦、脊髓、神經結或纖維、脂肪、肝臟、消化道、腎臟、心臟、肌肉、血管、結締組織等哺乳動物組織中提取核蛋白和胞漿蛋白。提取過程簡單方便，可在1小時內完成。制備的核蛋白和胞漿蛋白不僅純度高，保持天然活性，而且絕少交叉污染。

北京百奧萊博科技有限公司是一家專業的生物試劑銷售公司。公司主要經營血清、抗原、抗體等生物試劑產品，可以為您提供專業的技術服務，以優良的價格、優質的服務、優先的理念，滿足客戶的各方面的需求，與國內多家企業、單位建立了良好的長期合作關系，擁有較好的企業信譽和品牌形象。 主營產品:血清、抗體、抗原、核酸提取、核酸純化等生化試劑

使用注意事項：

● 旋帽離心管裝的試劑在開蓋前請短暫離心，將蓋內壁上的液體甩至管底，避免開蓋時液體灑落。

● 實驗過程中的所有試劑須預冷；所有器具須放-20℃冰箱預冷。整個過程須保持樣品處于低溫。

● 蛋白酶抑制劑儲存期間溶液如果出現沉淀，不影響使用，溶解后正常使用。

● 蛋白酶抑制混合物避免反復凍融。

● 如果試劑不能短時間內用完，蛋白酶抑制劑混合物不可以一次全部加入提取液。

● 可以根據自己實驗需要加入其它蛋白酶抑制劑單品。

使用方法：

細胞蛋白提取

1、提取液制備：

每200μL蛋白提取液A中加入1μL蛋白酶抑制劑混合物，混勻后置冰上備用。

每200μL蛋白提取液B中加入1μL蛋白酶抑制劑混合物，混勻后置冰上備用。

【注】

● 根據需要處理的樣品數量準備蛋白提取液，蛋白酶抑制劑混合物不可以一次全部加入提取液。

● 加過蛋白酶抑制劑的提取液一周內未使用完，再次使用前需要再次加入蛋白酶抑制劑。

● 蛋白樣品用于測定某些細胞內蛋白酶活性等下游實驗時，注意據實際情況調整抑制劑混合物是否加入。

● 以下步驟中使用的蛋白提取液為此步配制好的含蛋白酶抑制劑的提取液。

2、取5-10×10⁶個細胞，在4℃，1000×g離心5分鐘，小心吸取培養基，盡可能吸干，收集細胞。

【注】：

● 細胞數量根據實驗情況調整，每次的裂解液用量并不是一定的，請根據實際情況調整。

3、用冷PBS洗滌細胞兩次，每次洗滌后盡可能吸干上清。

【注】：

● 在1000×g條件下離心5分鐘。

4、每20μL體積細胞沉淀（約20mg,2×10⁶）中加入200-300μL冷的提取液A，高速渦旋振蕩15秒或吹打混勻，置2-8℃條件下振蕩15-30分鐘。

【注】：

● 用振蕩器/搖床的較低轉速，保持提取液輕微晃動即可。

● 沒有振蕩條件可以不振蕩，稍微延長處理時間，中間每隔幾分鐘用移液器吹打混勻。

● 如果部分細胞不能完全裂解，導致核蛋白純度低，可以延長振蕩時間。

5、然后在4℃，1000×g條件下離心10分鐘。

6、將上清吸入另一預冷的干凈離心管，即可得到胞漿蛋白，請置于冰上或-80℃冰箱保存備用。

7、沉淀用PBS洗滌一次，在4℃，1000×g條件下離心5分鐘，棄上清。

8、在沉淀中加入200μL冷的提取液B，高速渦旋振蕩5秒。

【注】：

● 根據后面和蛋白濃度測定的情況，可調整使用量，一般在50-200μL。

● 加提取液B前，必須盡可能吸干提取液A，否則會影響核蛋白純度。

● 也可以用PBS將沉淀洗滌一次。PBS重懸沉淀，12000×g離心5分鐘。

● 提取液B用量根據實驗細胞數量情況調整，細胞數量多則多加。也可根據預實驗時最終蛋白濃度實際情況調整。

9、置2-8℃條件振蕩30分鐘，至沉淀明顯減少甚至無明顯沉淀。

【注】：

● 用振蕩器/搖床的較低轉速，保持提取也輕微晃動即可。

● 沒有振蕩條件可以不振蕩，稍微延長處理時間，中間每隔幾分鐘用移液器吹打混勻。

10、在4℃，14000×g條件下離心10分鐘。

11、將上清吸人另一預冷的干凈離心管，即可得到核蛋白。

12、將上述蛋白提取物定量分裝于-80℃冰箱保存備用或直接用于下游實驗。

【注】：

● 建議用BCA法進行蛋白定量。

● 蛋白樣品-80℃存放一年沒有問題。注意不要被蛋白酶水解掉，不要被細菌污染。

組織蛋白提取

1、提取液制備：

每200μL蛋白提取液A中加入1μL蛋白酶抑制劑混合物，混勻后置冰上備用。

每200μL蛋白提取液B中加入1μL蛋白酶抑制劑混合物，混勻后置冰上備用。

【注】：

● 根據需要處理的樣品數量準備蛋白提取液，蛋白酶抑制劑混合物不可以一次全部加入提取液。

● 加過蛋白酶抑制劑的提取液一周內未使用完，再次使用前需要再次加入蛋白酶抑制劑。

● 蛋白樣品用于測定某些細胞內蛋白酶活性等下游實驗時，注意據實際情況調整抑制劑混合物是否加入。

● 以下步驟中使用的蛋白提取液為此步配制好的含蛋白酶抑制劑的提取液。

2、取適量組織樣本，用手術剪刀盡可能剪碎，加冷PBS，用組織勻漿機/勻漿器勻漿至無明顯肉眼可見固體，冰上靜置5分鐘，小心將上清吸入另一預冷的干凈離心管。

3、在4℃，500×g條件下離心5分鐘，棄上清。

4、每20mg組織（20-30μL細胞沉淀體積）中加入200μL冷的提取液 A，高速渦旋振蕩15 秒或吹打混勻，置2-8℃條件下振蕩20-30分鐘。

【注】：

● 用振蕩器/搖床的較低轉速，保持提取液輕微晃動即可。

● 沒有振蕩條件可以不振蕩，稍微延長處理時間，中間每隔幾分鐘用移液器吹打混勻。

● 如果部分細胞不能完全裂解，導致核蛋白純度低，可以延長振蕩時間。

5、然后在4℃，1000×g條件下離心10分鐘。

6、將上清吸入另一預冷的干凈離心管，即可得到胞漿蛋白，請置于冰上或-80℃冰箱保存備用。

7、沉淀用PBS洗滌一次，在4℃，1000×g條件下離心5分鐘，棄上清。

8、在沉淀中加入100μL-200μL冷的提取液B，高速渦旋振蕩5秒。

【注】：

● 加提取液B前，必須盡可能吸干提取液A，否則會影響核蛋白純度。

● 也可以用PBS將沉淀洗滌一次。PBS重懸沉淀，12000×g離心5分鐘。

● 提取液B用量根據實驗細胞數量情況調整，細胞數量多則多加。也可根據預實驗時最終蛋白濃度實際情況調整。

9、置2-8℃條件振蕩30-40分鐘，至沉淀明顯減少甚至無明顯沉淀。

【注】：

● 用振蕩器/搖床的較低轉速，保持提取也輕微晃動即可。

● 沒有振蕩條件可以不振蕩，稍微延長處理時間，中間每隔幾分鐘用移液器吹打混勻。

● 此步驟蛋白提取液處理產物中有時會出現透明膠狀物，屬正常現象。該透明膠狀物為含有基因組DNA等的蛋白復合物。不檢測和基因組DNA結合特別緊密的特定蛋白的情況下，可以直接離心取上清進行后續實驗即可；如果需要檢測和基因組DNA結合特別緊密的蛋白，則可以通過超聲處理，300w/10秒間隔10秒，超聲3分鐘，隨后離心取上清用于后續實驗。檢測一些常見的轉錄因子，例如NF-kappaB、p53等時，不必進行超聲處理。如果引入其他外源性蛋白質不影響下游實驗的話，也可以加入DNase處理。

10、在4℃，12000×g條件下離心10分鐘。

11、將上清吸人另一預冷的干凈離心管，即可得到核蛋白。

12、將上述蛋白提取物定量分裝于-80℃冰箱保存備用或直接用于下游實驗。

【注】：

● 建議用BCA法進行蛋白定量。

● 蛋白樣品-80℃存放一年沒有問題。注意不要被蛋白酶水解掉，不要被細菌污染。

常見問題分析：

● 細胞裂解速度慢？

為了充分保證提取得到的蛋白的活性，提取液采用獨特的保護蛋白的配方，裂解能力溫和，下游應用范圍廣。適當延長裂解時間。

● 蛋白濃度低？

處理部分樣本可能沒有裂解完全，導致蛋白濃度低。只要適當延長試劑A和試劑B的處理時間即可。最好在持續振蕩條件下處理，沒有振蕩器也可間隔幾分鐘用吸頭吹打混勻。

● 用什么方法定量蛋白？

建議用BCA法，不適合用Bradford法，因為試劑A中含有干擾Bradford法的組分，導致定量不準。如果已經進行過透析處理或者用脫鹽柱改換過緩沖體系，則可以用Bradford法定量。

● 提取時出現膠狀沉淀？

蛋白提取液B處理產物中有時會出現少量透明膠狀物，屬正常現象。該透明膠狀物為含有基因組DNA等的復合物。不檢測和基因組DNA結合特別緊密的特定蛋白的情況下，可以直接離心取上清進行后續實驗即可；如果需要檢測和基因組結合特別緊密的蛋白，則可以通過超聲處理，300w/10秒間隔10秒，超聲3分鐘，隨后離心取上清用于后續實驗。檢測一些常見的轉錄因子，例如NF-kappaB、p53等時，不必進行超聲處理。

● 提取的蛋白具有活性嗎？

本試劑盒不含有離子型去垢劑組份，不破壞蛋白的結構，沒有對蛋白質之間原有的相互作用的破壞，蛋白均保持其天然構象和活性。

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